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凝膠阻滯實驗的操作方法介紹

更新時間:2021-09-27   點擊次數:1772次
  一、凝膠阻滯實驗定義
  凝膠阻滯實驗(gelreiardadonassay,又稱為mobthtyshiftassay)方法簡單、靈敏,可以定量的特性使它在研究轉錄和基因調控中廣泛的應用。目前通常用于RNA(或DNA)結合蛋白的純化,確定一種已知或可能的RNA結合蛋白所識別的序列,建立反應常數(如親和常數和解離常數)等。
  二、操作方法
  1.RNA和蛋白的結合反應
  (1)冰浴,微量離心管中加入下列試劑,并混勻:末端標記的RNA片段1ng,10X結合緩沖液2μl,末標記的同種RNA適量,待測蛋白適量,加水至20μl。
  (2)37°C溫育反應液30min,溫度和時間需要通過經驗確定,對于大多數反應,30min足夠達到平衡。
  2.非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳
  (1)凝膠可以提前制備。用水和乙醇*淸洗玻璃板,使用0.7mm薄墊片,12齒梳子,每齒的尺寸為0.8cmX1.5cm,玻璃板的尺寸為18cmX23cm。
  (2)混合適當的儲存液得到40ml的溶液,含有6%丙烯酰胺、0.12%甲叉雙丙烯酰胺、25mmol/LTris堿,0.2mol/L甘氨酸、5%甘油,加入15mg過硫酸銨和TEMED,灌注到兩玻璃板之間,插入梳子,深度為1~1.2cm,等到*聚合,在最后的電泳溫度平衡凝膠。
  (3)去掉底部的墊片,將凝膠裝到電泳槽,在頂部和底部槽中加入電泳緩沖液(25mmol/LTris堿和0.2mol/L甘氨酸),用吸管吹打毎個孔確保孔中的凝膠底部任何空間的氣泡被去除,在上樣以前300V預電泳凝膠不少于30min。
  (4)上樣,300V電泳3h。
  (5)倒空電泳槽,取下凝膠。所有的放射性物質,包括RNA標記反應時未結合的核苷三磷酸仍然留在凝膠中,底部槽中的緩沖液應該沒有放射性,但是任何試驗參數發生了改變,必須測定底部糟中的緩沖液有沒有放射性(在任何情況下此操作都很有必要)。去掉一個玻璃板,依據定量的方法不同,凝膠可以置于Whatman濾紙上在凝膠干燥器中干燥,固定(12%甲醇,10%的乙酸)或直接用塑料膜包裹濕的凝膠直接進行定量。




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